Авторами работы [5] было установлено, что содержание спиртов холестерина (ХС) и глицерина в плазме крови зависит от числа двойных связей (ДС) жирных кислот (ЖК) в пуле липидов (ЛП). Были проведены измерения кинетических параметров окисления индивидуальных ЖК в ЛП низкой плотности (ЛПНП) на основе: а) регистрации расхода окислителя озона (О3) и б) прироста продуктов реакции - диеновых коньюгатов [6]. Было установлено, что высокое содержание в пище пальмитиновой насыщенной ЖК (НЖК) - основная причина повышения содержания ХС в составе ЛПНП (ХС-ЛПНП), формирования синдрома атеросклероза и его основного клинического проявления – атероматоза интимы артерий.
Цель настоящей работы – на клиническом материале выяснить диагностическое значение методов определения ненасыщенности пула ЖК в плазме крови кардиобольных: а) прямым титрованием ДС озоном (метод физической химии) и б) путем расчета общего числа ДС на основании определения концентрации индивидуальных ЖК с помощью газовой хроматографии (клиническая биохимия). Обсудить биохимические реакции, которые увеличивают in vivo число ДС в цепи атомов углерода и повышают ненасыщенность ЖК, и их возможное диагностическое значение.
Была отобрана группа пациентов (31 человек), наблюдавшихся в 6-м клиническом отделении Института кардиологии ФГУ РКНПК МЗ РФ и имеющих различную патологию сердечно-сосудистой системы. Кровь бралась из локтевой вены, плазма отделялась от эритроцитов и хранилась при температуре -70ºС. Концентрация индивидуальных ЖК определялась на газовом хроматографе модели «Вариан 3900». Использовалась кварцевая капиллярная колонка с неподвижной жидкой фазой «Супелковакс-10» [1]. Применялись стандартные образцы ЖК и их смеси фирмы Супелко, и вычислились калибровочные коэффициенты для каждой ЖК. Концентрация индивидуальных неэтерифицированных ЖК (НЭЖК) определялась методом А. Kurkis. Для этого липиды, полученные экстракцией из плазмы по Фолчу, подвергались силанизации действием горячего бис(N,O- триметилсилил) трифторацетамида, а затем триметилсилильные эфиры НЭЖК определялись на газовом хроматографе [1]. Содержание в плазме крови триглицеридов (ТГ), ХС-ЛПНП и ХС-ЛПВП определялось
«прямым» ферментативным методом. Все биохимические анализы пациентов и определение общего содержания НЭЖК (энзиматический метод) проводились на анализаторе модели Архитект–800 с использованием биохимических наборов фирмы Диасис и Эбботт (США).
Для определения суммарного содержания ДС ([С=С]) в липидном пуле плазмы крови использовался метод озонирования, основанный на способности озона реагировать с ДС в ЖК с константой скорости порядка 105 – 106 М-1с. [4]. Липидную фракцию из плазмы крови экстрагировали хлороформом и обрабатывали смесью по Фолчу. Измерения выполнялись на анализаторе ДС АДС-4М, в котором УФ-спектрофотометр регистрирует концентрацию О3 на входе и выходе из реактора, а встроенный интегратор рассчитывает расход озона, пропорциональный числу ДС в образце. В качестве стандарта использовался стильбен с одной ДС, а для контроля работы прибора применялся β-каротин, имеющий 11 ДС [2]. Погрешность измерения числа ДС в липидном пуле плазмы крови при учете сходимости результатов составила ± 15%. Статистическая обработка результатов проводилась с помощью стандартных алгоритмов программы MS Excel. Достоверность различия величин считалась по t-критерию Стьюдента (t-тест). Использовалась 95%-я доверительная вероятность; достоверными считались различия при р ≤ 0,05 (t-тест<0,05) [3]. Липидами, мы полагаем, являются ЖК и все соединения, в состав которых входят ЖК. И если ХС и глицерин это спирты, то при ковалентной эфирной связи с ЖК они становятся липидами.
На Рисунке 1 представлены результаты измерения суммарного содержания ДС ([C=C]), полученные методом озонирования и рассчитанные по сумме ДС всех ЖК, исходя из данных хроматографии. Корреляция результатов оказалась достоверно достаточно высокой с r=0,883. Это свидетельствует о возможности оценки ненасыщенности ЖК более простым и дешевым методом по озону.
Список литературы
1. Ариповский А.В., Колесник П.О., Веждел М.И., Титов В.Н. // Клиническая лабораторная диагностика. 2012. № 1. С. 3–8.
2. Гагарина А.Б., Евтеева Н.М. // Химическая физика. 2002. Т. 21. №7. С. 41–49.
3. Дерффель К. Статистика в аналитической химии. // М. Мир. 1994. 268 с.
4. Лисицын Д.М., Разумовский С.Д., Тишенин М.А., Титов В.Н. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2004. Т. 138. №11. С. 517–519.
5. Титов В.Н., Лисицын Д.М. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006. Т. 142. №11. С.521–524.
6. Титов В.Н., Коновалова Г.Г., Лисицын Д.М. и др. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2005. Т. 140. №7. С. 45–47.