12 октября 2015г.
Золпидем является представителем снотворных лекарственных средств третьего поколения, применяется в медицинской практике для лечения инсомний. Препарат обладает токсичностью. Описаны случаи интоксикаций золпидемом, в том числе со смертельным исходом. Для установления факта отравления необходимо определение золпидема в биологических объектах. Методики химико-токсикологического анализа золпидема в настоящее время разработаны недостаточно. Поэтому целью настоящей работы является определение золпидема в трупной ткани печени, а также установление предела определения и линейности.
Для выполнения поставленной цели мы использовали методику, разработанную ранее Карташовым В.А. с соавт. [1].
По 5,0 г тщательно измельченной ткани печени помещали в шесть пенициллиновых флаконов вместимостью 20 мл, в пять из которых добавляли по 1 мл водного раствора золпидема тартрата, содержащего 200 мкг в 1 мл, в шестой флакон помещали 1 мл воды. Содержимое флаконов перемешивали на аппарате для встряхивания в течение 2-х часов. В каждый флакон добавляли по 10,0 мл ацетона, экстрагировали в течение 10 минут, центрифугировали 5 мин при 3000 об/мин (I ступень). Экстракты отделяли и процедуру экстрагирования повторяли ещё раз с использованием 5,0 мл ацетона (II ступень). Ацетоновые экстракты, полученные на каждой ступени процеживали через небольшие ватные тампоны в сухие пенициллиновые флаконы и выпаривали при 40о С на водяной бане под слабым током воздуха до полного удаления ацетона. Содержимое флаконов смешивали с 5,0 мл 0,1 н. раствора соляной кислоты (рН 2), добавляли 5 мл н-гексана и экстрагировали в течение 5 мин. Органическую фазу отделяли центрифугированием и не исследовали, а водную - подщелачивали 25 % раствором гидроксида аммония до рН 9 и экстрагировали 5 мл хлороформа в течение 5 мин. Хлороформные экстракты отделяли, и экстракцию хлороформом повторяли еще один раз. Объединенные экстракты фильтровали через сухой бумажный фильтр в присутствии безводного сульфата натрия и выпаривали досуха при 40°С под слабым током воздуха. Сухие остатки с помощью нескольких капель хлороформа количественно наносили на стартовую линию пластины «Sorbfil» 100·150 см с флюоресцирующей добавкой в виде полосы, с одной стороны которой наносили смесь метчиков, с другой – стандартный раствор золпидема. Хроматографирование проводили в системе ацетон без предварительного насыщения камеры парами растворителя. Полученные хроматограммы обрабатывали реактивом Драгендорфа, зону окрашенную в оранжевый цвет, расположенную в V хроматогрофической группе на уровне стандарта (Рисунок 1), счищали в пенициллиновые флаконы.
Рис.1. Хроматограмма, полученная при исследовании золпидема: 1 - точка нанесения смеси метчиков; 1/ - точка нанесения стандарта , 2 и 2/- стартовая и обнаруженная полосы золпидема соответственно.
Во флаконы добавляли по 5,0 мл 0,1 н. раствора щелочи и 5 мл хлороформа и экстрагировали в течение 5 мин и полученную смесь центрифугировали при 2000 об/мин в течение 5 мин. Хлороформные экстракты отделяли, фильтровали через сухой бумажный фильтр в присутствии безводного сульфата натрия и выпаривали досуха при 40о С на водяной бане под слабым током воздуха. Сухие остатки растворяли в 10 мл спирта и спектрофотометрирова
ли в диапазоне 200-400 нм по сравнению с раствором, полученным при исследовании холостой пробы, измеряя величины оптических плотностей в максимуме поглощения спиртового раствора основания золпидема (при 243 нм). Данные спектрофотометрического анализа приведены на Рисунке 2, и в Табл.1.
Рис.2. Спектр абсорбции золпидема, выделенного из ткани печени (n=5): I, II –ступени экстракции.
Таблица 1
Выход золпидема при экстрагировании из ткани печени (n=5), λmax = 243 нм.
Номера опытов
|
1 ступень
|
2 ступень
|
Сумма по ступеням
|
В пересчете на основание٭
|
Значение D
|
Выход
(%)
|
Значение D
|
Выход
(%)
|
Значение
D
|
Выход
(%)
|
Выход
(%)
|
1.
|
0,772
|
41,49
|
0,382
|
20,50
|
1,154
|
61,99
|
76,87
|
2.
|
0,758
|
40,72
|
0,375
|
20,13
|
1,133
|
60,85
|
75,45
|
3.
|
0,852
|
45,78
|
0,385
|
20,69
|
1,237
|
66,47
|
82,43
|
4.
|
0,695
|
37,34
|
0,362
|
19,43
|
1,057
|
56,77
|
70,39
|
5.
|
0,704
|
37,85
|
0,417
|
22,43
|
1,121
|
60,28
|
74,75
|
|
0,756±0,06
|
40,64±3,22
|
0,384±0,02
|
20,64±1,06
|
1,140±0,06
|
61,28±3,33
|
75,98±4,14
|
٭Примечание: Молекулярная масса золпидема тартрата – 764,88, основания – 616,88.
Как видно из полученных данных (Рисунок 2.,Табл.1), золпидем экстрагируется из ткани печени за две ступени и определяется УФ-спектрофотометрическим методом в среднем в количестве 76%.
Установление предела обнаружения и линейности золпидема при экстрагировании его из ткани печени
Для установления минимального количества золпидема, которое может быть выделено из ткани трупной печени по вышеизложенной методике и определения линейности, были выполнены следующие эксперименты.
Экстрагирование золпидема из 5,0 г измельченной ткани печени, содержащей 200, 100, 50, 25, 10, 5, и 2,5 мкг золпидема тартрата, проводили, как выше описано, выполняя по 5 параллельных определений и одному холостому для каждой концентрации. Результаты приведены в Табл.3, и на Рисунке 3, которые показывают, что предел определения золпидема по приведенной методике составляет 5 мкг в 5 г печени. При этом линейность золпидема лежит в пределах 5 – 100 мкг (Рисунок 4).
Таблица 3
Данные по экстрагированию из ткани печени разных количеств золпидема (n=5)
Количество золпидема в 5 г печени (мкг)
|
Dср
|
Выход
золпидема
(%)
|
|
100
|
1,225
|
76,25
|
76,25±5,03
|
50
|
0,611
|
76,08
|
76,08±4,71
|
25
|
0,306
|
76,14
|
76,14±3,55
|
10
|
0,123
|
76,59
|
76,59±6,02
|
5
|
0,062
|
76,24
|
76,24±9,70
|
Рис.4. График зависимости величины оптической плотности от концентрации золпидема
Таким образом при использовании методики, основанной на применении ацетона в качестве экстрагента, вариантов экстракционной и хроматографической очистки, золпидем определяется в достаточно больших количествах независимо от его содержания в образцах. Установленный предел определения золпидема при экстрагировании из ткани печени свидетельствует о высокой чувствительности описанной методики.
Список литературы
1. Карташов В.А., Чернова Л.В. Химико-токсикологический анализ. Ч. 1: Выделение токсических веществ из биологических объектов. Майкоп: Качество, 2008. 188 с.